白及多糖对PM2.5致小鼠亚急性损伤的防治作用研究

萌到你眼炸
854次浏览
2020年07月29日 20:43
最佳经验
本文由作者推荐

蟑螂会咬人吗-合作协议


白及多糖对PM2.5致小鼠亚急性损伤的防治作用研究
沈颖芝1,姚 玥1,丁兴红2,蒋福升3,金丽霞1,李美芽2,周芳美1*
【摘 要】摘 要 目的:探讨白及多糖 对PM2.5致小鼠亚急性损伤的防治作用。方法:96只雄性
ICR小鼠随机均分为正常组、模型组、 白及多糖预保护组、白及多糖治疗组,白及多糖另设低、中
、高剂量。采用气管滴注PM2.5悬液的方 法建立小鼠亚急性肺损伤模型。预保护组和治疗组分别于
造模前后灌胃不同剂量的白及多糖溶液,均持续 1周。全自动血细胞分析仪检测小鼠外周血中嗜酸
性粒细胞(EOS)、中性粒细胞(NEUT)、单核 细胞(MONO)含量;计算比较肺、心脏、脾脏系数变化
;光镜下观察小鼠肺组织病理学变化;采用C BA法检测小鼠肺泡灌洗液(BALF)中TNF-α、IFN-γ、
MCP-1、IL-6、IL-1 0、IL-12水平。结果:模型组小鼠全肺系数和脾系数明显升高,BALF中六种细
胞因子表达不同 程度增强,外周血中EOS、NEUT、MONO分泌增加,差异均有统计学意义(P <
0.01) 。白及多糖预保护组和治疗组均能改善小鼠肺组织炎性浸润,调节肺、心脏、脾脏系数趋于正
常水平,抑 制BALF中免疫因子过度表达,缓解由局部经血液循环引发的全身炎症反应,与模型组比
较差异有统计 学意义(*P < 0.05, **P < 0.01)。结论:白及多糖能够有效预防和治疗PM2.5相关 疾
病,与减轻炎症和免疫损伤有关,显示白及抗雾霾具有良好的发展前景。
【期刊名称】《药物 资讯》
【年(卷),期】2018(007)006
【总页数】8
【关键词】关键词 白及多糖,PM2.5,亚急性损伤,防治作用
文章引用: 沈颖芝, 姚玥, 丁兴红, 蒋福升, 金丽霞, 李美芽, 周芳美.白及多糖对PM2.5致小鼠亚急性损
伤的防治作用研究[J].药物资讯, 2018, 7(6): 144-151.
Received: Oct.24th, 2018; accepted: Nov.7th, 2018; published: Nov.15th, 2018
Copyright © 2018 by authors and Hans Publishers Inc.
This work is licensed under the Creative Commons Attribution International License (CC
BY).
http:ensesby4.0
1.引言
随着工业化和城 市化进程加快,由煤炭燃烧、汽车尾气排放等因素导致的大气污染严重影响人类健
康,其中以细颗粒物( PM2.5)危害性最强[1],易引起系统性炎症反应,造成呼吸系统、心血管系统
、神经系统、生殖 系统等多方面病变[2],甚至诱发癌症。因此,寻找有效防治雾霾的途径迫在眉睫

< br>中医倡导“正气存内,邪不可干”和“治未病”,强调“正气胜邪,祛邪外出方可平衡阴阳;或未
病先治以明摄生”,由此提出的“中药抗雾霾法”已经成为健康领域新的研究热点。传统中药白及
Ble tilla striata (Thunb.)Reiehb.f.盛产自云南、浙江、湖北、贵州等地,能够 止血、消肿、生肌、
抗炎、抑菌、镇痛等[3],主治肺伤咳血、肺结核和矽肺,极具药用价值。在中医 理论指导下,本研
究探讨白及多糖对PM2.5所致亚急性损伤的防治作用和机制,旨在为中药抗雾霾研 究提供科学实验
依据,并可望今后应用于环境污染相关疾病的防治,具有十分重要的现实意义。
2.材料
2.1.动物
SPF级健康成年雄性ICR小鼠,体重20~25 g,购于上海斯莱 克实验动物有限责任公司提供(许可证
号:SCXK(沪)2012-000),饲养于浙江中医药大学 动物实验研究中心,且本研究获得浙江中医药大
学实验动物伦理委员会批准。小鼠自由摄食饮水,适应性 喂养7 d后进入实验阶段。
2.2.药材
白及干燥块茎切片由浙江恩睿生物科技有限公司提供 ,经浙江中医药大学丁志山教授鉴定为紫花药
用白及块茎。
2.3.试剂与仪器
IL- 10试剂盒、IL-12试剂盒、MCP-1试剂盒、TNF-α试剂盒、IL-6试剂盒、IFN-γ试剂盒( 均由上海
信帆生物科技有限公司提供,批号2),BCA蛋白定量试剂盒(康为世纪生物科技有限公司),石英膜(GE Healthcare公司),ECLIPSE Ti-DH荧光倒置显微镜(日本N ikon公司),DS-580i全
自动血细胞分析仪(华创普惠医疗器械有限公司),大流量大气颗粒 物采样器(青岛聚创环保设备有限
公司),流式细胞仪(美国BD公司)。
3.方法
3 .1.白及多糖制备与纯化
干燥白及块茎切片粉碎过60目筛。准确称取,按照物料比1:30,加入蒸 馏水冷凝回流提取2次,每
次1.5 h,过滤,合并滤液,减压浓缩,缓慢加入3倍量95%乙醇,沉淀,4℃静置过夜,4200
rmin离心15 min,得白及粗多糖。采用Sevag法[4]去蛋白,冷冻干燥,称重,−20 ℃储存备用。
2.5采样与处理
2017年10月至同年11月,在浙江中医药大学经大流量大 气颗粒物采样器采用石英膜采样PM2.5。
将富载PM2.5细颗粒物的滤膜裁剪成1 × 1 cm大小,浸入超纯水,避光超声40 min × 2次,摇床
200 rmin洗脱样品16 h。 2次洗脱液经6层无菌纱布过滤,滤液真空冷冻干燥得PM2.5颗粒,称重
,−80℃避光储存备用。 用生理盐水配成浓度5 mgmL的PM2.5悬液,超声20 min,高温灭菌


,4 ℃保存,临用前充分混匀即可。
3.3.动物分组与给药
SPF级雄性ICR小鼠随机分成8组 (n = 12)。给药剂量分为3组:低剂量组,50 mg(kg·BW);中剂量
组,200 mg(kg·BW);高剂量组,400 mg(kg·BW),上述药物剂量在实验室前期研究基础的指导下,通过预实验测试计算不同剂量小鼠的半数致死量得以确定。实验中另设预保护组、治疗组、正
常 对照组和模型对照组:预保护组于造模前灌胃相应剂量的白及多糖溶液,连续7 d;治疗组于造模
期间和造模后连续灌胃相应剂量的白及多糖溶液,共计7 d;正常对照组和模型对照 组均相应灌胃生
理盐水进行对照。
2.5染毒
采用气管滴注法染毒。用10%水合氯醛 麻醉小鼠后,用丝线挂住小鼠门牙将其悬挂在木板上(倾角约
60°),用拇指、食指轻轻顺向拉出舌头 ;透射灯对准动物颈部打开光源;用咽拭子轻轻将咽部分泌
物擦净;手持套管针通过声门裂后,将动物垂 直位,套管针顺势下插至阻力大停止;此时若成功插
入气道,事先注入带有静脉留置针的PVC软管内的 PM2.5悬液会随着呼吸左右波动,以此确认插管
成功。迅速从气道拔出套管针,关闭光源,悬挂约5 ~10 s后将小鼠放下侧卧位放置,待麻醉苏醒后
放回鼠笼。单次滴注剂量为1.6 mL(kg·B W),隔天染毒,共计4次。
3.5.指标检测
3.5.1.血细胞计数
10%水合氯 醛麻醉小鼠后摘眼球取血,血液流入EDTA抗凝管,即可颠倒混匀试管。经全自动血细
胞分析仪对嗜酸 性粒细胞(EOS)、中性粒细胞(NEUT)、单核细胞(MONO)进行计数分析。
3.5.2.脏 器系数测定
脱颈处死小鼠,解剖取肺、心脏、脾脏,生理盐水快速洗去血迹,滤纸吸干,称重,利用公式 计算

3.5.3.肺组织病理学改变
取肺,4%甲醛固定,乙醇脱水,二甲苯透明、 浸蜡,石蜡包埋,切片,经HE染色后中性树胶封片
,倒置显微镜下观察各组小鼠肺组织结构形态改变。
3.5.4.肺泡灌洗液(BALF)提取与指标分析
解剖小鼠暴露气管,用止血钳夹闭主气管 近喉端,缓慢注入0.5 mL生理盐水,然后缓慢抽出灌洗液
,操作同时轻按胸部以提高洗出率。如上 反复灌洗3次,得肺泡灌洗液。经4℃、3000 r·min−1离心
15 min,加入细胞裂解液后4℃静置30 min,再于4℃、1200 r·min−1离心30 min,取 上清液。按
照试剂盒说明书,采用流式液相多重蛋白定量技术(CBA法)检测肺泡灌洗液中TNF-α 、IFN-γ、


MCP-1、IL-6、IL-10、IL-12的表达水平。
3.6.统计学处理
采用Graph Pad Prism 5.0和SPSS 19.0统计软件进行实验数据分析,结果以±s表示。采用One-
way ANOVE比较多组间差异,采用One-way ANOVE和LSD检验方法分析组间差异,以P <
0.05或P < 0.01表示差异有统计学意义。
4.结果
4.1.肺组织病理学 改变
经HE染色后光镜观察,结果如图1所示:正常组小鼠肺组织仅少量炎性细胞浸润,肺泡结构完整< br>,分布均匀,肺泡腔内无渗出物,肺泡间隔正常,小支气管壁结构较完整。模型组小鼠肺组织出现
大量炎性细胞,小支气管部分损伤,支气管肿胀,肺泡发生断裂、融合,肺泡腔增大,间隔增厚
,伴有明 显出血、渗出现象。白及多糖组小鼠肺组织炎性浸润明显改善,肺泡结构较完整,支气管
黏膜和支气管壁 较完整,出血、渗出减少。中、高剂量白及多糖的疗效优于低剂量,预保护组小鼠
的改善情况优于治疗组 。见图1。
4.2.对小鼠全肺、心、脾系数的影响
与正常组比较,PM2.5染毒后小鼠的全 肺系数和脾脏系数明显升高,但心脏系数下降,差异有统计
学意义(P < 0.01)。与模型组比较 ,不同浓度的白及多糖组小鼠的全肺、心脏、脾脏系数均不同程
度下降,其中中剂量的白及多糖对小鼠脏 体比的影响最明显,差异有统计学意义(*P < 0.05, **P <
0.01)。见表1。< br>4.3.对肺泡灌洗液(BALF)中免疫指标的影响
PM2.5染毒后肺泡灌洗液中 TNF- α、IFN-γ、MCP-1、IL-6、IL-10、IL-12含量增加,模型组与正
常组比较存在 显著性差异(P < 0.01)。造模前后灌胃不同剂量的白及多糖溶液,均使上述细胞因子
表达水平 降低。预保护组中、低剂量和治疗组中剂量的白及多糖抑制效果最明显,各组表现出一定
的剂量-反应关 系。六因子中TNF-α、IFN-γ、IL-6表达更敏感。各剂量白及多糖组与模型组相比
,均在统 计学上存在显著差异(*P < 0.05,**P < 0.01)。见图 2。
4.4.血细胞计数 结果
PM2.5染毒诱发炎症反应,与正常组比较,模型组小鼠血液中的嗜酸性粒细胞(EOS)、中性 粒细胞
(NEUT)、单核细胞(MONO)含量明显增加,两组计数差异存在统计学意义(P < 0 .01)。低、中、高
剂量白及多糖干预后,炎性细胞均减少,其中中剂量组细胞计数下降最显著(*P < 0.05, **P <
0.01)。见图3。
5.结论


大气细 颗粒物PM2.5污染严重影响人类生活生产,威胁机体健康,对肺、心脏、肝脏、脑等均产生
不同程度 的毒效应[5][6][7][8]。某研究显示,虽然我国以煤烟主导的大气污染模式正逐步向煤–油复
合型转变,但目前煤炭污染仍较为严重,在燃油、燃煤、冶金、烟尘、交通、建筑六种主要污染源
中, 燃煤源在PM2.5组分中占比最大[9]。炎症反应是自身免疫系统主动抵御外界刺激并及时修复炎
性 损伤的一种防治措施[10]。PM2.5通过活化炎症细胞,调节炎症因子释放及其与细胞因子的相互
作用[11],如PM2.5刺激能够导致TNF-α、IL-6、IL-12等炎性因子异常释放,免疫调节紊 乱,并趋
化嗜酸性粒细胞、中性粒细胞等过度表达引起炎症级联反应使局部损伤全身化[12],促进局 部和系
统相关急慢性疾病的发生、发展。同时机体促炎和抑炎反应相互影响,如IL-10能够抑制单核 细胞分
泌IL-6、TNF-α、IL-12、IFN-γ等促炎因子[13],通过负反馈机制调控免 疫系统动态平衡,减轻炎
性损伤。
依据中医学“固本扶正”的思想,从病机入手,标本兼顾。相 关研究表明,红景天能够抑制机体氧
化应激,改善肺功能;参莲能够抵抗炎症,修复细胞损伤;冬虫夏草 能够增强巨噬细胞的吞噬能力
,促进PM2.5超细颗粒物从肠道排出等[14][15][16]。现 代药理研究亦表明,白及具有多脏俱补的扶
正功效,尤在益气补肺[17],其多糖成分具有调节免疫、 平衡炎症体系的作用[18],能够提高自身
防御能力。本研究表明,不同浓度的白及多糖主要通过抑制 局部和全身多系统炎症反应,进一步提
高对PM2.5致亚急性损伤的修复能力,具体表现在能够不同程 度地减轻小鼠肺组织和气管的炎性浸
润,选择性地改善肺、心、脾等脏器代偿性肥大,有效抑制小鼠肺泡 灌洗液中TNF-α、IFN-γ、
MCP-1、IL-6、IL-10、IL-12的表达,此外也参 与调节外周血液循环中的炎症反应。另外关于药物
具体的干预机制和相互影响,尚需深入探究。综上所述 ,本研究为中医从“正气存内,邪不可干
”和“治未病”角度防治PM2.5相关疾病提供新思路,加之 多糖本身毒副作用少、生物活性广等特
点,使白及多糖的开发研究极具应用前景和卫生学意义。
参考文献
[1]秦玉英, 刘颖, 敬岳, 等.PM2.5对呼吸系统的病理影响及中医药防治[J].中华中医药杂志, 2015,
30(10):3477-3482.
[2]张少红, 于少华.PM2.5的来源、危害及防治措施研究[J].环境科学与管理, 2014, 39(7): 92-94.
[3]汤逸飞, 阮川芬, 应晨, 等.白及属植物化学成分与药理作用研究进展[J].中草药, 2014, 45(19):
2864-2872.
[4]齐慧玲, 魏绍云, 王继伦, 等.Sevag法去除白及多糖中蛋白的研究[J].天津化工, 2000(3): 20-21.
[5]毛海霞, 韩砆石, 项文静, 等.PM 2.5对呼吸系统影响的相关研究进展[J].中华全科医学, 2015,
13(9):1517-1519.
[6]袁凌珂, 章明徐, 朱娱, 等.不同浓度大气细颗粒污染物PM2.5对心脏组织功能的影响[J].现代医药卫
生, 2016,32(19): 2942-2944.


[7]Zheng, Z., Zhang, X.B., Wang, J.M., et al.(2015)Exposure to Fine Airborne Particulate
Matters Induces Hepatic Fibrosis in Murine Public Access, 63, 1397-1404.
[8]朱雨晴, 李金泉, 赵云, 等.PM2.5对脑组织急性氧化损伤的影响研究[J].环境与健康杂志, 2016,
33(8): 679-682.
[9]王菲菲, 王先良, 刘芳盈, 等.燃煤 PM2.5不同组分对血管内皮细胞的氧化损伤效应[J].中国环境科
学, 2014,34(3): 780-785.
[10]仝国辉, 李煜, 郑德胜, 等.PM2.5通过激活 Nlrp3炎性小体诱导小鼠肺炎症反应[J].毒理学杂志,
2017, 31(3):176-181.
[11]Li, R.J., Kou, X.J., Xie, L.Z., et al.(2015)Effects of Ambient PM2.5 on Pathological Injury,
Inflammation, Oxidative Stress, Metabolic Enzyme Activity, and Expression of c-fos and c-
jun in Lungs of nmental Science and Pollution Research, 22, 20167-
:10.1007s11356-015-5222-z
[12]Liu, W., Zhang, M.J., Feng, J.Q., et al. (2017)The Influence of Quercetin on Maternal
Immunity, Oxidative Stress, and Inflammation in Mice with Exposure of Fine Particulate
Matter during nmental Research and Public Health, 14, 592-
:10.3390ijerph14060592
[13]Wang, H.T., Song, L.Y., Ju, W.H., et al. (2017)The Acute Airway Inflammation Induced by
PM2.5 Exposure and the Treatment of Essential Oils in Balbc ific Reports, 7,
Article Number: :10.1038srep44256
[14]刘平安, 莫阳, 张国民, 等.红景天对细颗粒物PM2.5所致急性肺损伤大鼠干预作用的研究[J].湖南
中医药大学学报, 2015, 35(7): 5-7.
[15]刘栩岑, 李玉洁, 王娅杰, 等.参莲提取物对 PM2.5染毒 RAW264.7细胞损伤的保护作用[J].中国中
药杂志,2015, 40(10): 1977-1983.
[16]劳乔聪, 孙岚, 张英鸽, 等.冬虫夏草促进PM2.5超细颗粒物排出的作用和机制探讨[J].食品科技,
2017, 42(2):67-71.
[17]郭琪, 孟烨, 赵阳, 等.白及提取物对博莱霉素致大鼠肺纤维化的治疗作用[J].国际药学研究杂志,
2016, 43(3):518-523.
[18]Yue, L., Wang, W., Wang, Y., et al. (2016)Bletilla striata Polysaccharide Inhibits
Angiotensin II-Induced ROS and Inflammation via NOX4 and TLR2 Pathways. International
Journal of Biological Macromolecules, 89, 376-
:ac.2016.05.002


基金项目
国家自然科学基金资助(81673672,81503329);浙江省中医药科技 计划项目(2017ZZ005);中国
博士后科学基金资助(2016M592022)。

伊索寓言读后感500字-幼儿园教学工作总结


鞍山大学-马旭


德语专业就业前景-八年级英语试题


mpv是什么意思-gct考试真题


贵州大学排名-禁毒主题班会教案


实现共产主义-党在我心中演讲稿


中国情人节是几月几号-童话天地手抄报


香港特首任期-读书活动方案