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实验1 细胞膜的通透性
【实验目的】
了解分子量、脂溶性大小、电解质和非电解质溶液对细胞膜透性的影响。
【实验原理】
细胞膜在不断变化的环境中，必须保持自身的稳恒状态，才能生存。细胞膜允许一些物质通
透， 又能降低甚至阻挡另一些物质的通透，所以细胞膜具有选择通透性。水分子可以自由通
过细胞膜，当细胞 处于低渗液环境时，水分子大量渗到细胞内，使细胞膨胀，进而破裂，血
红蛋白释放到介质中，由不透明 的红细胞悬液变为红色透明的血红蛋白溶液，这就是溶血现
象。 溶血现象可作为测量物质进入红血细胞速度的一种指标。
红细胞置于乙二醇、丙三醇（甘油）、葡萄 糖等摩尔浓度的高渗液中，乙二醇等分子进入红
血细胞，使细胞内的渗透性活性分子的浓度大为增加，继 而导致水的摄入，使细胞膨胀，细
胞膜破裂，发生溶血。溶血现象发生的快慢与进入细胞的物质的分子量 大小有关。分子量大
的进入细胞慢，发生溶血所需时间也长。
非极性化合物易溶于脂溶剂， 但在水中溶解度甚小。碳链越长，脂溶性越大。一种化合物在
脂溶剂中的溶解度与其在水中溶解度之比， 叫分配系数。
各种非电解质溶液，只要单位面积中所含的分子数相同，就具有相同的渗透压。电解< br>质溶液，如氯化钠与葡萄糖分子数相等时，氯化钠产生的渗透压要大的多。具有相同渗透压
的某非 电解溶液与某电解质溶液浓度之比，叫等渗系数。用ⅰ来表示。
ⅰ= 葡萄糖的等渗摩尔浓度 氯化钠的等渗摩尔浓度
发生溶血者为低渗液，所以把发生溶血的前一管溶液的浓度近似视为红细胞等渗。
【实验仪器、材料和试剂】
（一）仪器、用具
小烧杯、试管、试管架、刻度吸管、注射器、秒表
（二）材料
含适量肝素的兔血或鸡血
（三）试剂
1M乙二醇水溶液、1M丙三醇水溶液、 1M葡萄糖水溶液、3M甲醇、3M乙醇、3M丙醇、
M8、M9、M10、M12、M14葡萄糖溶液 、M12、M13、M14、M16、M18氯化钠溶液
【方法与步骤】
（一）分子量大小对膜通透性的影响
1．在编号的三支试管中，分别用吸管吸入2ml 1M乙二醇，1M丙三醇，1M葡萄糖高渗液。
2．先后分别用注射器滴加两滴血液，用手指按住管口，倒置一次。
3．观察溶血时间，最长延至10min。
4．将实验结果列入如下所示的表格中。

溶液
1M乙二醇
1M丙三醇
1M葡萄糖
分子量
62
92
180
溶血时间

（二）脂溶性大小对细胞膜透性的影响
1．编号的三支试管分别加入2ml 3M的甲醇、乙醇、丙醇溶液。
2．分别先后加入两滴血液，按住管口倒置一次。
3．观察溶血时间。
4．将实验结果记入如下所示的表格中。

溶液
3M甲醇
3M乙醇
3M丙醇
分子量 分配系数 溶血时间
32.04
46.07
58.0
0.0097
0.0357
0.156




（三）电解质和非电解质溶液对细胞膜透性的影响
1．将试管编号，注明溶质名称及摩尔浓度。
2．按编号分别加入不同浓度的葡萄糖及氯化钠溶液 2ml。
3．每管各加入两滴血液，按住管口，倒置一次。
4．室温放置15min ，观察发生溶血的浓度，确定等渗浓度。
5．按下表记录实验结果。


溶液
M8
葡萄糖
氯化钠


M9


M10


摩尔浓度
M12


M13


M14


M16


M18



6．计算等渗摩尔系数

实验2 鸡红细胞的体外融合

【实验目的】
1．了解聚乙二醇（PEG）诱导体外细胞融合的基本原理。
2．通过PEG诱导鸡红细胞之间的融合实验，初步掌握细胞融合的基本方法。

【实验原理】
细胞融合（cell fusion）又称体细胞杂交，是指用人工方法使两 个或两个以上的体细胞
融合成异核体细胞，随后，异核体同步进入有丝分裂，核膜崩溃，来自两个亲本细 胞的基因
组合在一起形成只含有一个细胞核的杂种细胞（hybrid cell）。细胞融合技术是研 究细胞遗
传、基因定位、细胞免疫、病毒和肿瘤的重要手段。依据融合过程采用的助融剂的不同，细胞融合可分为：（1）病毒诱导的细胞融合，如：仙台病毒（hemagglutinating virus of Japan，
HVJ）；（2）化学因子诱导的细胞融合，如：聚乙二醇（poly ethyleneglycol，PEG）；（3）
电场诱导的细胞融合；（4）激光诱导的细胞融合。
PEG是乙二醇的多聚化合物，存在一系列不同分子质量的多聚体。PEG可改变各类细胞
的膜 结构，使两细胞接触点处脂类分子发生疏散和重组，引起细胞融合。该方法应用分子质
量为400—60 00的PEG溶液引起细胞的聚集和粘连，产生高频率的细胞融合。融合的频率和
活力与所用PEG的分 子质量、浓度、作用时间、细胞的生理状态与密度等有关。

【实验仪器、材料和试剂】
（一）仪器、用具
刻度离心管、离心机、血细胞计数板、水浴锅、滴管、显微镜、烧杯、容 量瓶、凹面载
玻片、盖玻片、酒精灯等。
（二）材料 鸡红细胞
（三）试剂
1．0.85 % NaCl 溶液
2．GKN液：8.0g NaCl，0.4g KCl，1.77 g NaHPO·2HO，0.69 g NaHPO·HO，2.0g葡
2422 42
萄糖，0.01g酚红，溶于1000ml重蒸水中。
3．50%（WV）PEG溶液
1. 取50g PEG（分子质量=4000）放入100ml 瓶中，高压灭菌20分钟。
2. 让PEG冷却至50～60℃，勿让其凝固。
3. 加入50ml预热至50℃的GKN液，混匀，置37℃备用。
4．Hanks原液 (10×)：
NaCl 80.0g
NaHPO·12HO 1.2ｇ
242
KCl 4.0g
KHPO0.6ｇ
24

MgSO·7 HO 2.0ｇ
42
葡萄糖 10.0g
CaCl1.4g
2
1）称取1.4g的CaCl，融于30～50ml的重蒸水中。
2
2）取 10 00ml的烧杯及容量瓶各一个，先放重蒸水800ml于烧杯中，然后按上述配方顺
序，逐一称取药品 。必须在前一药品完全溶解后，方可加入下一药品，直到葡萄糖完全溶解
后，再将已溶解的CaCl溶液 加入，最后加水至1000ml。
2
5．Hanks液：
Hanks原液 100ml
重蒸水 896ml
0.5%酚红 4ml
配好的Hanks液，分装包扎好贴上标签，经过灭菌后，4℃保存。
6．Janus green 染液

【方法与步骤】
1. 鸡红细胞的获得：
取新鲜鸡血，迅速加入肝素（100U 肝素 5ml全血）混合，制成抗凝全血。
2. 鸡红细胞储备液的制备：
在抗凝全血的试管中，加入4倍体积的0.85 %NaCl溶液，制成红细胞储备液，置于4℃冰
箱内可供一周内使用。
3. 鸡红细胞悬液的制备：
取鸡红细胞储备液1ml，加入4ml 0.85 %NaCl溶液，混匀后，1200rpm离心5min，弃去上
清液，再加入5ml 0.85 %N aCl溶液按上述条件离心一次。最后，弃去上清液，加入10ml的GKN
溶液制成鸡红细胞悬液。
4. 计数：
取0.5ml鸡红细胞悬液，加3.5ml的GKN溶液进行稀释，在血细胞 计数板上计数。若细胞
浓度过大，用GKN溶液稀释至110个ml左右。
5. 鸡红细胞的收集：
吸取1ml鸡红细胞悬液放入离心管中，加入4mlHanks液混匀，1000 rpm离心5min。弃去上
清液，用手指轻弹离心管底部，使沉淀的血细胞团块松散。
6. PEG诱导细胞融合：
吸取0.5ml 37℃的50%PEG溶液，慢慢沿着离心 管壁逐滴加入，边加边轻摇离心管，使PEG
与细胞混匀，然后在37℃水浴中静置2min。
7. 终止PEG作用：
缓慢加入5ml Hanks液，轻轻吹打混匀，于37℃水浴中静置5min。
8. 制备细胞悬液：
用吸管轻轻吹打细胞团数次使细胞团分散，1000rpm离心5min，使细胞完全沉降。弃去
上清液 ，加Hanks液，再离心一次，弃多数上清，留少许溶液，混匀。
7

9. 染色和镜检：
吸取细胞悬液，在凹面载玻片上滴一滴，加入Janus green染液混匀，染色3min后盖上盖
玻片，在显微镜下观察细胞融合情况。
10. 计算细胞融合率：
细胞融合率是指在显微镜的视野内，已发生融合的细胞其细胞核总数与该视野内所 有细胞
（包括已融合细胞）的细胞核总数之比，通常以百分比表示。
采用方法如下：在高倍 镜下随机计数200个细胞(包括融合的与未融合的细胞)，以融合细胞
(含两个或两个以上的细胞核的 细胞)的细胞核数除以总细胞核数(包括融合与未融合的细胞
核)即得出融合率。公式如下：



【注意事项】
1. 本实验中，用0.85%NaCl液代替了Alsver 液。实验证实，用Alsver 液保存的红细胞时
间较短，而改用生理盐水则明显延长红细胞的保存时间且不影响细胞融合率。
2. 高Ca浓度能够提高细胞融合率。有些抗凝剂中含有和Ca结合的化合物，比如Alsver液中柠檬酸钠的酸根与血液中的Ca形成难解离的可溶性络合物，导致血液中的Ca
2+2+
2+2+

浓



度降低，故起抗凝血作用，同时会造成细胞的融合率较低。
3. 必须严格控制PEG的作 用时间，通常处理细胞1～2min。PEG和二甲基亚砜（DMSO）
并用，可以提高细胞的融合率。
4. 融合细胞继续培养就变成一个杂种细胞，它的染色体数不是两核的倍数，因为一些染
色体会逐渐消失。
【作 业】
1. 画出观察到的融合细胞，并计算融合率。
2. 试说明细胞融合的关键。